一、實驗原理：

Trizol試劑的主要成分是苯酚，對細胞進行裂解，使細胞中的蛋白質以及核酸物質解聚。苯酚雖然可以有效的使蛋白質變性，但它不能全部抑制RNA酶的活性，因此Trizol中還加入了8-羥基喹啉、異硫氰酸胍、β-巰基乙醇等來抑制內源和外源RNase（即RNA酶）。存放在Trizol 中的樣品可以在負八十保存半年左右。

二、樣本材料及其處理方法：

貼壁培養細胞

1.吸出培養液，細胞用預冷的1×PBS清洗兩次。2. 吸出PBS洗液，然后每1×108-2×107的培養細胞中加入1 ml的Trizol，輕搖培養皿，確保溶液均勻分布于細胞表面。（可用細胞刮刀剝離細胞）

2.吸出PBS洗液，然后每1×108-2×107的培養細胞中加入1 ml的Trizol，輕搖培養皿，確保溶液均勻分布于細胞表面。（可用細胞刮刀剝離細胞）

3. 使用移液器反復吹打使細胞脫落，然后將內含細胞的裂解液轉移至離心管中，再用移液器吹打直至裂解液中無明顯沉淀（溶液清亮）。

4. 室溫靜置5-10分鐘后，再進行后續的RNA提取操作。

懸浮培養細胞

1. 將懸浮細胞收集至離心管中，12000 rpm 4℃離心2分鐘，棄上清，用預冷的1×PBS清洗兩次。

2. 向1×106-2×107細胞中加入1ml的Trizol。

3. 用移液器吹打至裂解液清亮無明顯沉淀。

4. 室溫靜置5-10分鐘后，再進行后續的RNA提取操作。

動物組織、植物材料樣品

1. 將準確稱取的RNA提取樣品轉移液氮預冷的研缽中，用研杵研磨組織（研磨過程中需要不斷向研缽中補加液氮），直至研磨成粉末狀，然后向粉末中加入適量的Trizol并混勻。（針對柔軟易裂解的組織樣本，可以使用勻漿器加入適量Trizol進行勻漿裂解。）

2. 將上述混合液轉移至離心管中，用移液器反復吹打充分混勻。室溫靜置5分鐘，12,000 rpm 4℃離心5-10分鐘。

3. 小心吸取上清液，移入新的離心管中，再進行后續的RNA提取操作。

三、操作步驟：

（1）樣本前處理。

（2）向上述裂解液中加入Trizol體積量1/5氯仿，充分混合（渦旋或用槍頭混勻）。室溫靜置15分鐘。

（3）12000 rpm 4℃離心15分鐘。小心取出離心管，此時勻漿液分為三層，即：上清液（含RNA）、中間蛋白層及下層有機相。吸取上清液轉移至另新的離心管中。

注：每管大概取 200-300 μl，此步驟非常關鍵，提出的RNA質量好純度高即可。若吸取水相時吸到有機相會導致雙峰，A260/230特別低。

（4）沉淀 RNA：向其中加入相同體積異丙醇，上下顛倒混勻。在-20℃放置10 min。12000 rpm 4℃離心10 min后棄去上清。

（5）清洗 RNA：向沉淀中加入500 μl 預冷的無水乙醇，吹散沉淀洗滌RNA，洗滌兩次，12000 rpm 4℃離心后棄去上清。

注：把沉淀彈起來，讓其懸浮在酒精中，然后放1-2min，讓酒精充分接觸沉淀，充分溶解有機試劑，然后再離心。

（6）打開離心管，室溫干燥沉淀約5分鐘。

注：不要離心干燥，否則RNA將很難溶解，如果殘留乙醇較多可延長干燥時間。

（7）向離心管中加入20 μl DPEC水溶解RNA。將溶解后的RNA放入-80℃保存。

注：如果提取的是組織樣本，溶解液可以多加點。

（8）取2 μl進行電泳。

四、注意事項：

1. 防止RNA酶污染。

• 戴好口罩，手套。
• 全程最好在生物安全柜操作（根據實驗條件）
• 實驗所涉及的試劑/溶液，尤其是水，必須確保RNase-Free。耗材均需要通過DPEC處理。

2. 明確目標。

• 提取成功標準是RNA的質量和純度，而不是得率。

3. 測量結果：

• A260/A280：1.8-2.2，若<1.8則表明有蛋白質污染；

• A260/A230：1.5-2.4，若<1.5則表明有明顯的有機物如糖、膚、苯酚的污染。

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